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      2. 利用CRISPR研究基因組“暗物質(zhì)”的論文

        時間:2021-06-13 18:26:11 論文 我要投稿

        利用CRISPR研究基因組“暗物質(zhì)”的論文

          超過98%的人類基因組由非編碼基因組成。這些非編碼基因被稱為基因組的“暗物質(zhì)”,它們能調(diào)控編碼基因的表達,從而影響人類健康和疾病進程。自從人類基因組序列被公開發(fā)表以來,科學家們努力解析基因中的功能元件,包括非編碼調(diào)節(jié)區(qū)——參與轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)的順式調(diào)節(jié)區(qū)和非編碼RNA(ncRNA)。轉(zhuǎn)錄因子在整個基因組中可能有數(shù)百至數(shù)千個結合位點,因此研究起來非常復雜。目前常用的兩種研究轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控基因表達位點的方法是:1,耗時且復雜的增強子研究;2,在非天然狀態(tài)中克隆增強子或啟動子序列,開展并行研究。最近Sanjana等人和Fulco等人的研究都指出,可以利用CRISPR技術在天然狀態(tài)里研究非編碼調(diào)控元件的功能。

        利用CRISPR研究基因組“暗物質(zhì)”的論文

          大規(guī)模的生化試驗使人們發(fā)現(xiàn)了由潛在的、被數(shù)百種蛋白靶向結合的調(diào)節(jié)序列。值得一提的是,識別脫氧核糖核酸酶I超敏感位點(deoxyribonuclease I hypersensitive site, DHS)和大規(guī)模染色質(zhì)免疫沉淀測序(chromatin immunoprecipitation–sequencing, ChIP seq)方法的提出,讓科學家們能夠全面地解析蛋白與染色質(zhì)結合的情況。然而,把這些分子和功能調(diào)控聯(lián)系起來非常困難。

          由于使用不同的CRISPR載體可以無偏向性地敲除蛋白編碼基因,因此CRISPR篩選是研究非編碼基因功能的有力工具。與人類細胞中NGG(前間區(qū)序列鄰近基序)序列上游的基因序列同源的單引導RNA(single guide RNA, sgRNA)可以引導CRISPR系統(tǒng)到達特定基因組位點,從而特異性地引起突變。首個CRISPR“敲除”篩選研究在基因組規(guī)模上誘導了全基因敲除,并克服了RNA干擾篩選中的諸多限制,例如脫靶效應和敲除不完全(圖:CRISPR-Cas9篩選方法)。

          Sanjana等人使用CRISPR工具來研究黑色素瘤細胞中調(diào)控vemurafenib(B-Raf蛋白V600E突變中,600位點的纈氨酸被谷氨酸所替代,而Vemurafenib抑制攜帶了V600E突變的B-Raf蛋白中的絲氨酸 – 蘇氨酸蛋白激酶結構域)抗性的序列。研究人員使用CRISPR工具靶向主要的抗性調(diào)節(jié)區(qū)域——NF1(neurofibromatosis type 1,神經(jīng)纖維瘤病1型基因)、NF2(neurofibromatosis type 2,神經(jīng)纖維瘤病2型基因)和CUL3(cullin 3,泛素連接酶3)。該方法中,向?qū)NA和反式激活crRNA(trans-activating crRNA)融合,引導來源于釀膿鏈球菌的Cas9(spCas9)在目標位點處誘導DNA雙鏈斷裂,從而產(chǎn)生突變。結果顯示,靶向CUL3的sgRNA在轉(zhuǎn)錄起始點最為富集。sgRNA富集的.區(qū)域,CUL3被敲除,這表明,CUL3似乎與染色體相互作用、組蛋白翻譯后修飾,以及轉(zhuǎn)錄因子結合位點阻斷的調(diào)控區(qū)域相關。

          Fulco等人利用CRISPR干擾系統(tǒng),即利用失活的Cas9和KRAB蛋白融合,沉默靶向序列的表達。這種方法雖然實現(xiàn)了靶向性的基因沉默,但并未引起基因突變。研究者們設計的靶向序列圍繞在MYC和GATA1基因附近(這兩個基因能調(diào)控K562紅白血病細胞的增殖)。他們首先使用病毒感染細胞,將CRISPRi系統(tǒng)載帶進入細胞,然后使用多西環(huán)素誘導dCas9靶向目標序列。他們發(fā)現(xiàn),sgRNA富集點恰好和包含多個轉(zhuǎn)錄因子結合位點的DHS重合。更有趣的是,dCas9靶向GATA1或組蛋白脫乙酰酶6(HDAC6)增強子時,都會減少HDAC6表達。這表明,對于共同的增強子(GATA1和HDAC6存在共同的增強子),基因之間存在競爭關系。鑒定出來的MYC增強子的位置與轉(zhuǎn)錄起始位點、CCCTC-結合因子(CTCF,介導染色質(zhì)相互作用)結合位點都是吻合的。這可能是MYC調(diào)控細胞增殖的機制。

          雖然CRISPR-spCas9和CRISPRi篩選方法都成功識別了非編碼調(diào)節(jié)元件,但CRISPRi只能用于轉(zhuǎn)錄抑制,鑒于不同基因之間的轉(zhuǎn)錄抑制是不同的,CRISPR不一定能適用于其它基因的轉(zhuǎn)錄抑制。但總的來說,這兩項研究都證明了CRISPR在研究非編碼調(diào)控網(wǎng)絡上的潛力。此外,研究已經(jīng)證實,雖然非編碼基因的突變只能造成微小的基因表達變化,但可以造成大的表型變化,這意味著CRISPR篩選也可以推廣到其它疾病的表型測定上。盡管全基因組關聯(lián)研究已經(jīng)鑒定出致病的生殖細胞突變,但是系統(tǒng)性研究致病的體細胞突變中的非編碼調(diào)控元件突變也具有重要意義。例如,研究表明,一些疾病的發(fā)病原因是特定轉(zhuǎn)錄因子結合位點增加的突變、基因重組造成的融合事件、ncRNA造成的突變,以及偽基因。對這些非編碼調(diào)控元件的研究能加深我們對疾病發(fā)生、發(fā)展的理解,從而促進臨床手段的研發(fā)。

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